TU Darmstadt / ULB / TUprints

Targeted protein degradation of FK506-binding proteins

Geiger, Thomas Maximilian (2024)
Targeted protein degradation of FK506-binding proteins.
Technische Universität Darmstadt
doi: 10.26083/tuprints-00026757
Ph.D. Thesis, Primary publication, Publisher's Version

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Item Type: Ph.D. Thesis
Type of entry: Primary publication
Title: Targeted protein degradation of FK506-binding proteins
Language: English
Referees: Hausch, Prof. Dr. Felix ; Kolmar, Prof. Dr. Harald
Date: 4 December 2024
Place of Publication: Darmstadt
Collation: vii, 178 Seiten
Date of oral examination: 4 December 2023
DOI: 10.26083/tuprints-00026757
Abstract:

The FK506-binding proteins FKBP12, FKBP51 and FKBP52 are peptidyl-prolyl isomerases and best known for their ability to enable the natural molecular glues FK506 and Rapamycin. Among them, the large FKBP51 and FKBP52 are co-chaperones in the Hsp90-machinery and key regulators of glucocorticoid receptor signaling, with FKBP51 inhibiting and FKBP52 potentiating GR activity.

To support the development of FKBP-directed drugs, I first established a panel of assays to address key biochemical and molecular biological aspects of FKBPs. (i) I developed a HTRF-based binding assay for FKBP ligands. This assay allows precise affinity determination for a new generation of ultra-high affinity FKBP ligands. (ii) Next, a NanoBRET assay for FKBP ligand profiling in living cells was developed, optimized and semi-automated. With this assay, FKBP ligands can be rapidly profiled for intracellular target-engagement. (iii) To assess the key cellular functions of FKBP51 and FKBP52 in glucocorticoid receptor signaling, I established GR activity reporter gene assays. Additionally, I developed (iv) eGFP fusion-based FKBP12- and FKBP51-level reporter assays as well as (v) a HTRF-based FKBP52 level reporter assay to assess the degradation of the respective FKBPs.

Ligand affinity is a key parameter for ligand efficacy. The HTRF assay demonstrated that FKBP ligands biochemically bind to FKBPs with picomolar affinities. Yet, intracellular target occupation is critical for ligands to act in a cellular environment. The NanoBRET binding assays unambiguously demonstrated for the first time that FKBP ligands occupy human FKBPs in living cells. However, a general off-set between biochemical affinity and intracellular target engagement became evident. Additionally, the results showed the superiority in cellular potency of macrocycles compared to linear SAFit-type ligands with similar affinity. The NanoBRET assay bridges the gap between biochemical binding and cellular effects and will thereby further guide ligand optimization towards ligands with cellular potency. In a cellular context, FKBP51 is a key regulator and inhibitor of glucocorticoid signaling, which constitutes the functional link to stress-related disorders. Using the glucocorticoid signaling reporter gene assays, I was able to demonstrate that the synthetic ligands SAFit2 and 18(S Me) did not reactivate FKBP51-suppressed GR signaling and were functionally silent, albeit they occupied the FK506-binding site as evidenced by the NanoBRET assay. This demonstrates that FKBP51 regulates the GR through scaffolding functions and that the binding pocket is dispensable for GR regulation. However, the immunosuppressive natural product FK506, which protrudes far further from the binding-site reactivated GR signaling. This shows that FK506, but not smaller ligands, can abrogate regulatory FKBP51:GR contacts.

The reporter gene data show that the scaffolding functions of FKBP51 cannot be addressed by synthetic FKBP ligands. But ligands for non-functional binding sites can be used to generate PROTACs that degrade the protein and therefore abolish all protein functions. Since the development of PROTACs for FKBP51 turned out to be much more challenging than expected, a large number of PROTAC candidates needed to be profiled. Towards this aim, I established the eGFP-fusion based FKBP12- and FKBP51-level reporter assays and the HTRF-based FKBP52-level reporter assay to test 220 FKBP-directed PROTAC candidates for degradation of the respective FKBPs. Surprisingly, the PROTAC candidates had a strong degradation bias for FKBP12 over the close homologs FKBP51 and FKBP52. Among the candidates, a plethora of PROTACs was active for FKBP12, six for FKBP51 and none for FKBP52. Subsequent, FKBP12-FKBP51FK1 swap mutant analysis showed that the presence of the FK2 and TPR domain negatively influences the degradability. However, linker-based optimization of a first generation PROTAC with limited selectivity overcame the negative degradation bias for FKBP51 and lead to potent FKBP51 PROTAC SelDeg51 with improved cellular activity and selectivity. Ultimately, SelDeg51 is the best-in-class compound and efficiently depletes FKBP51. I established SelDeg51 as a useful functional tool through thorough cellular characterization and by confirming its mode of action. In subsequent reporter gene assays, I could show that FKBP51 depletion, but not inhibition, potently reactivated GR signaling. This demonstrated a fundamentally different pharmacology with enhanced efficacy compared to the functionally silent synthetic ligands.

Nature repeatedly resorted to FKBPs as adapter proteins to enable molecular glues. Taken together with the high degradability of FKBP12 this indicated FKBP12 as ideal model system to discover molecular glue degraders. In favorable cases, ligands can be molecular glues that possess additional gain of function properties. In this work, I used the eGFP-fusion based FKBP12 reporter assays to discover FKBP12_eGFP degrading molecular glues through cellular testing of >900 in-house FKBP ligands. The structure-activity relationship of the initial screening hits and inactive analogs enabled the rational optimization of the most promising hit into PPu670 with doubled cellular potency. Subsequent cellular analysis revealed a FK506-binding site- and proteasome- but not neddylation-dependent mode of action. Finally, a CRISPR-based genome-wide knockout screen identified UBR3 as the relevant engaged E3 ligase. This work demonstrates that target-focused libraries can contain molecular glue degraders and that the E3 ligase UBR3 is glue-able and can be (re)directed to neo-substrates. Overall, the assays I established will be instrumental to guide future FKBP ligand development. SelDeg51 can be used to target all protein functions and answer the question if cellular FKBP51 levels matter in certain contexts. Finally, my work demonstrates that cellular testing of target-focused libraries can be a fruitful approach to discover molecular glue degraders.

Alternative Abstract:
Alternative AbstractLanguage

Die FK506-bindenden Proteine FKBP12, FKBP51 und FKBP52 sind Peptidyl-Prolyl Isomerasen und am besten dafür bekannt, dass sie den Wirkmechanismus der natürlichen molekularen Kleber FK506 und Rapamycin ermöglichen. Innerhalb der FKBP-Familie fungieren die großen Proteine FKBP51 und FKBP52 als Cochaperone in der Hsp90-Maschinerie und als Schlüsselregulatoren des Glucocorticoid Rezeptor Signalwegs. Dabei hemmt FKBP51 die GR-Aktivität und FKBP52 aktiviert diese.

Um die Entwicklung von FKBP-basierten Liganden zu unterstützen, habe ich zunächst verschiedene Testsysteme etabliert, um Aufschluss über biochemische und molekularbiologische Schlüsselaspekte von FKBPs zu ermöglichen. (i) Ich habe einen HTRF-Bindungstest für FKBP-Liganden entwickelt, der eine präzise Messung der Bindungsaffinität von ultra-hoch affinen FKBP-Liganden möglich macht. (ii) Anschließend wurde ein NanoBRET-Testsystem zur Charakterisierung von FKBP-Liganden in lebenden Zellen entwickelt, optimiert und semi-automatisiert. Dieses Testsystem ermöglicht eine schnelle Charakterisierung der intrazellulären Bindung von FKBP-Liganden und FKBPs. (iii) Des Weiteren habe ich zur Untersuchung der Schlüsselfunktionen von FKBP51 und FKBP52 im GR-Signalweg ein GR Aktivität Reportergen-Testsystem etabliert. (iv) Um den Abbau von FKBPs zu untersuchen, entwickelte ich darüber hinaus eGFP-fusionsbasierte Reportersysteme zur Bestimmung von zellulären FKBP12- und FKBP51-Spiegeln, sowie einen HTRF-basiertes Reportersystem für die FKBP52-Mengen.

Die Affinität von Liganden ist ein Schlüsselparameter für deren Wirksamkeit. Der HTRF-Bindungstest zeigte, dass FKBP-Liganden biochemisch mit picomolarer Affinität an FKBPs binden. Jedoch ist für die Wirksamkeit von Liganden in einem zellulären Umfeld die intrazelluläre Zielproteinbindung entscheidend. Mit dem NanoBRET-Testsystem konnte zum ersten Mal gezeigt werden, dass FKBP-Liganden menschliche FKBPs in lebenden Zellen binden. Dabei wurde jedoch eine systematische Diskrepanz zwischen der biochemischen Bindungsstärke und der zellulären Zielproteinbindung deutlich. Darüber hinaus zeigten die Ergebnisse, dass makrocyclische Liganden in ihrer zellulären Potenz gegenüber linearen Liganden der SAFit-Klasse (bei gleichen biochemischen Affinitäten) überlegen sind. Das NanoBRET-Testsystem schließt die Lücke zwischen biochemischer Bindung und zellulären Effekten und wird die Ligandenoptimierung in Richtung zellulärer Potenz weisen. FKBP51 ist im zellulären Kontext ein hemmender Schlüsselregulator des Glucocorticoid Rezeptor Signalwegs, der das funktionelle Bindeglied zu Stress-bedingten Störungen darstellt. Mit dem GR Aktivität Reportergen-Testsystem konnte ich zeigen, dass die synthetischen Liganden SAFit2 und 18(S Me) den GR Signalweg nicht reaktivierten und keine funktionellen Effekte zeigten, obwohl das NanoBRET-Testsystem zeigte, dass diese die FK506-Bindetasche blockieren. Dies zeigt, dass FKBP51 den Glucocorticoid Rezeptor durch Gerüstfunktionen reguliert und die Bindetasche dabei entbehrlich ist. Jedoch reaktivierte der immunsuppressive Naturstoff FK506, welcher viel weiter aus der Bindetasche hervorsteht, den Glucocorticoid Rezeptor Signalweg. Dies zeigte, dass FK506, aber nicht kleinere Liganden, regulatorische FKBP51:GR-Kontakte aufheben können.

Die Reportergen-Testsysteme zeigen, dass die Gerüstfunktionen von FKBP51 nicht durch synthetische, kleine Liganden aufgehoben werden können. Jedoch können diese Liganden, die eine nicht funktionelle Bindetasche adressieren, zur Entwicklung von PROTACs genutzt werden. PROTACs degradieren das Protein und blockieren damit alle Proteinfunktionen. Da die Entwicklung von PROTACs für FKBP51 deutlich herausfordernder war als erwartet, musste eine große Anzahl an PROTAC-Kandidaten getestet werden. Um 220 FKBP-fokussierte PROTAC-Kandidaten bezüglich des Abbaus der relevantesten FKBPs zu testen, habe ich eGFP-fusionsbasierte Proteinmengen-Reportersysteme für FKBP12 und FKBP51, sowie einen HTRF-basiertes Proteinmengen-Reportersystem für FKBP52 etabliert. Überraschenderweise hatten die PROTAC-Kandidaten eine starke Degradationspräferenz für FKBP12 gegenüber den ähnlichen Homologen FKBP51 und FKBP52. Von den Kandidaten war dabei eine Großzahl aktiv für FKBP12, sechs für FKBP51 und keiner für FKBP52. Eine sich anschließende Analyse von FKBP12-FKBP51FK1 Tauschmutanten zeigte, dass die FK2- und TPR-Domäne die Abbaubarkeit negativ beeinflussen. Die Linker-basierte Optimierung eines PROTACs der ersten Generation mit begrenzter Selektivität konnte jedoch die negative Abbaupräferenz für FKBP51 überwinden und führte zu dem potenten FKBP51 PROTAC SelDeg51 mit verbesserter zellulärer Aktivität und Selektivität. SelDeg51 baut FKBP51 auf effiziente Weise ab und ist die beste Substanz ihrer Art. Durch Bestätigung des Wirkmechanismus und eine gründliche zelluläre Charakterisierung habe ich SelDeg51 als nützliches funktionelles Werkzeug etabliert. Anschließend konnte ich in einem Reportergen-Testsysteme zeigen, dass der Abbau von FKBP51, aber nicht die Inhibition, den GR-Signalweg auf potente Weise reaktivierte. Dieses Ergebnis demonstriert eine fundamental neuartige Pharmakologie mit höherer Wirksamkeit gegenüber kleinen funktionell inaktiven synthetischen Liganden.

Die Natur hat wiederholt auf FKBP12 als Adapterprotein zurückgegriffen, um die Wirksamkeit von molekularen Klebern zu ermöglichen. Zusammen mit der hohen Abbaubarkeit von FKBP12 deutet dies an, dass FKBP12 ein ideales Modellsystem für die Entdeckung von Proteinabbau induzierenden molekularen Klebern sein könnte. In geeigneten Fällen können Liganden molekulare Kleber sein, die zusätzlichen Funktionen besitzen. Ich habe in dieser Studie das eGFP-fusionsbasierte Proteinmengen-Reportersystem für FKBP12, genutzt um durch zelluläre Tests aus über 900 hauseigenen FKBP-Liganden Proteinabbau-induzierende molekulare Kleber für FKBP12_eGFP zu identifizieren. Aus der Struktur-Aktivitätsbeziehung der primären Treffer sowie aus der Struktur von inaktiven Analoga konnte eine rationale Strategie zur Optimierung des vielversprechenden Treffers abgeleitet werden. Die Optimierung führte zur Synthese der Substanz PPu670, welche doppelt so effektiv wie das Ausgangsmolekül war. Anschließende zelluläre Tests zeigten einen FK506-Bindestelle- und Proteasom-abhängigen, aber Neddylierungs-unabhängigen Wirkmechanismus. Letztendlich identifizierte eine CRISPR-basierte Genom-weite Funktionsverlustanalyse die E3 Ligase UBR3 als relevantes Zielprotein. Meine Studie demonstriert, dass Zielprotein-fokussierte Substanzbibliotheken abbauende molekulare Kleber enthalten können und dass sich diese durch zelluläre Testsysteme identifizieren lassen.

Zusammengefasst werden die von mir entwickelten Testsysteme wegweisend in der künftigen Entwicklung von FKBP-Liganden sein. SelDeg51 kann genutzt werden, um alle Proteinfunktionen zu blockieren und um die Frage zu beantworten, ob zelluläre FKBP51-Mengen in einem bestimmten Kontext wichtig sind. Darüber hinaus zeigt meine Arbeit, dass zelluläre Tests von zielgerichteten Bibliotheken ein fruchtbarer Ansatz sein können, um Protein-abbauende molekulare Kleber zu entdecken.

German
Status: Publisher's Version
URN: urn:nbn:de:tuda-tuprints-267571
Classification DDC: 500 Science and mathematics > 540 Chemistry
Divisions: 07 Department of Chemistry > Clemens-Schöpf-Institut > Fachgebiet Biochemie
07 Department of Chemistry > Clemens-Schöpf-Institut
Date Deposited: 04 Dec 2024 12:19
Last Modified: 06 Dec 2024 08:11
URI: https://tuprints.ulb.tu-darmstadt.de/id/eprint/26757
PPN: 524387044
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