Hochauflösende cell-attached Patch-Clamp Kapazitätsmessungen werden zum ersten Mal verwendet, um Exo- und Endozytose in Hefe zu untersuchen. Biologische Plasmamembranen haben ähnliche Eigenschaften wie Kondensatoren, deshalb weisen diese eine bestimmte Kapazität auf, die anhand der Patch-Clamp Technik bestimmt werden kann. Da die Kapazität eines Kondensators/biologischen Membran von der Oberfläche abhängt, kann man Veränderungen an der Plasmamembranoberfläche, die bespielweise durch Fusion oder Abschnürung von Vesiklen verursacht werden, als Änderungen in der Kapazität messen. Bei Anwendung von cell-attached Patch-Clamp Messungen an Saccharomyces cerevisae war es möglich einzelne exo- und endozytotische Ereignisse als Änderungen in der Plasmamembrankapazität, mit hoher zeitlicher und räumlicher Auflösung, zu detektieren. Die Ergebnisse zeigen vier unterschiedliche kinetische Typen von exo- und endozytotischen Ereignissen auf, welche ebenfalls in Eukaryoten beobachtet werden können. Sie können in transiente und permanente endo- und exozytotischen Ereignissen eingeteilt werden. Die gemessenen Kapazitätsänderungen liegen im Bereich von 0.2 - 1 fF, welche umgerechnet Vesikeldurchmesser im Größenbereich von ca. 90 - 200 nm entsprechen. Der Median der Vesikelverteilungen liegt bei ca. 132 nm für endozytotische und bei 155 nm für exozytotische Vesikel. Bei guten Nährstoffbedingungen beträgt die Frequenz 8.1 Ereignisse pro Stunde für Endozytose und 12.3 Ereignissen pro Stunde für Exozytose. Auch wenn diese Frequenzen etwas niedrig erscheinen, stimmen sie gut mit den gemessenen Daten in Hefezellen und -protoplasten überein. Protoplasten, die ohne Glukose inkubiert wurden, weisen niedrigere Frequenzen auf mit 3.8 exozytotische und zwei endozytotische Ereignisse pro Stunde. Das zeigt, dass die Protoplasten Energie für die Prozesse von Exo- und Endozytose benötigen. Darüber hinaus können neben der Bestimmung von Vesikelgrößen und der Ereignisfrequenzen, auch Fusionsporen in Hefen gemessen werden und eine grobe Einteilung der Leitfähigkeiten und der Porengrößen vorgenommen werden. Weitere Untersuchungen werden anhand einer Temperatursensitiven Mutante sec6-4 des Hefestamms SY1 durchgeführt. Durch die Mutation wird der sekretorische Weg, bei einer Inkubationstemperatur von 37 °C, inhibiert. Ziel war es, einen direkten Zusammenhang zwischen exozytotischen Ereignissen und gemessene Kapazitätsänderungen herzustellen. In diesem Zusammenhang werden die Zellen dieser Mutante bei einer einschränkenden Temperatur von 37 °C für drei Stunden inkubiert, um Vesikel im Zytosol akkumulieren zu können. Danach wurden die Zellen bei Zimmertemperatur gemessen. Pro Stunde konnten 71.6 exozytotische Ereignisse und 16 endozytotische Ereignisse gemessen werden. Als Kontrolle wurden die Zellen ebenfalls für drei Stunden bei einer nicht-einschränkenden Temperatur von 25 °C, bei der der sekretorische Weg nicht inhibiert ist, inkubiert und gemessen. Bei dieser Temperatur wurden pro Stunde 15.1 exozytotische und 9.2 endozytotische Ereignisse, ähnlich zum Referenzstamm BY4741, gemessen. Diese Ergebnisse demonstrieren, dass die Frequenzen anhand von Mutationen im sekretorischen oder endozytotischen Weg moduliert werden können. In dieser Arbeit konnte die Methode der Kapazitätsmessungen für die Untersuchung von Exo- und Endozytose an Hefe etabliert werden. Es war zum ersten Mal möglich einzelne Vesikel in Echtzeit in Hefe aufzulösen und deren Durchmesser zu bestimmen. Außerdem konnte man auch zum ersten Mal Fusionsporen von Vesikeln in Hefe untersuchen und den Fusionsporendurchmesser bestimmen. Mit den Untersuchungen konnte gezeigt werden, dass Hefe Protoplasten ein geeignetes System für die Untersuchung von Exo- und Endozytose durch Kapazitätsmessungen sind. Dies stellt eine weitere Untersuchungsmöglichkeit für beide Prozesse in Hefe dar.