Im Genom von zwei entfernt verwandten Algenviren der Familie Phycodnaviridae wurden Kaliumkanal-ähnliche Gene gefunden. Das Paramecium bursaria Chlorellavirus kodiert Kcv, den ersten bekannten viralen Kaliumkanal. Im Genom von Ectocarpus siliculosus Virus kodiert das Offene Leseraster 223 einen weiteren möglichen viralen Kaliumkanal, Kev. Durch die heterologe Expression eines chimären Proteins aus Kcv und der Pore von Kev konnte in dieser Arbeit die Funktionalität der Kev-Kanalpore gezeigt werden. Dennoch konnte durch die heterologe Expression des Kev-wildtyp-Proteins in Säugerzellen (HEK293 und CHO) oder in Oozyten von Xenopus laevis keine spezifische Kaliumkanalaktivität an der Plasmamembran dieser Zellen nachgewiesen werden. Als Ursache für die fehlende selektive Kanalaktivität kommt die intrazelluläre Verteilung des Proteins im Expressionssystem in Frage: Confokal-mikroskopische Aufnahmen von HEK293-Zellen, die Kev-GFP Fusionsprotein exprimierten, zeigen punktförmige Fluoreszenzmaxima. Im Gegensatz dazu akkumulierte die Fluoreszenz von Kcv-GFP Fusionsprotein in tubulären, membranartigen Strukturen. Durch eine Verlängerung der carboxy-terminalen Transmembranhelix von Kev-GFP-Fusionsprotein um drei oder sechs Aminosäurereste konnte jedoch dasselbe Verteilungsmuster wie mit Kcv-GFP-Fusionsprotein hergestellt werden. Die Verteilung der untersuchten viralen Kanäle wird also von der Länge der carboxy-terminalen Transmembranhelix bestimmt. Diese Ergebnisse weisen auf eine mögliche physiologische Rolle des Kev-Proteins in der dünnen Membran des Endoplasmatischen Retikulums (ER) der Wirtszelle oder in der inneren Virusmembran von Ectocarpusviren hin, welche vom ER des Wirts abgeleitet ist. In der vorliegenden Arbeit fanden sich auch Hinweise dafür, dass der Kaliumkanal Kcv aus Chlorellaviren im Viruspartikel lokalisiert ist: (i) Kcv-mRNA wird in der späten Phase der Virusreplikation synthetisiert; während dieser Phase findet auch die Assemblierung von neuen Viruspartikeln statt. (ii) Weiter konnte eine Depolarisation des Membranpotentials bei der Infektion von Chlorella NC64A durch Chlorellaviren mit dem spannungsabhängigen Fluoreszenzfarbstoff Bis-Oxonol gemessen werden. Diese Depolarisation zeigte eine sehr ähnliche Pharmakologie wie die Kanalaktivität von Kcv in heterologen Expressionssystemen und die Replikation der Viren (in plaque-Tests). Dies deutet auf eine essentielle Funktion von Kcv während der ersten Minuten der Infektion durch Chlorellaviren hin.